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Le traitement (pendant la lactation et la période complète de tarissement) des bovins laitiers infectés par la douve du foie via un contrôle en cascade n’est plus nécessaire. Distocur apporte la solution.
Les exploitations qui pratiquent le pâturage ou la mise à l’herbe peuvent être touchés tôt ou tard par la douve du foie. Elle gagne de plus en plus de terrain en Europe occidentale et l’on enregistre de manière croissante des infections aux Pays-Bas et en Belgique. Bien que la mortalité par la douve du foie soit rare chez les bovins, est-ce pour cela que cette maladie est moins importante?
La douve du foie ou distomatose est une maladie parasitaire chez les ruminants causée par des trématodes ou des vers plats. La grande douve du foie qui est active dans nos régions s’appelle Fasciola hepatica. Cette maladie entraîne des pertes économiques importantes dans le monde. Les pertes consistent principalement en une baisse de la production laitière, une perte de poids et des foies rejetés à l’abattoir. De plus, l’infection par la douve du foie peut augmenter ou réduire l’effet d’autres agents pathogènes ou interférer avec leur diagnostic (voir plus loin dans ce texte). Ce qui est parfois oublié, c’est que ce parasite peut également causer des problèmes aux autres herbivores et aussi aux humains.
Là où les infections par la douve du foie ne se produisaient auparavant que dans les pays du sud, nous avons vu ces dernières années que les infections par la douve du foie sont également devenues de plus en plus courantes dans notre pays. Les conditions climatiques modifiées (hivers plus doux, températures élevées et plus de précipitations) améliorent les conditions de développement de la douve du foie. En outre, les conditions météorologiques changeantes garantissent également que la période à risque de contamination par la douve du foie commence plus tôt dans la saison de pâturage. Mais il existe d’autres facteurs de risque qui favorisent l’expansion de la douve du foie dans une ferme. Une étude menée au Danemark a révélé que les génisses et les vaches taries qui paissent dans les pâturages humides sont des facteurs de risque importants de maintien de l’infection par la douve du foie dans la ferme. Il ne faut pas oublier non plus l’achat de vaches infectées, l’absence ou le mauvais traitement des jeunes bovins infectés et trop peu de contrôle sur la présence ou non d’une résistance. Par exemple, la résistance au triclabendazole peut provoquer une propagation régulière des infections par la douve du foie.
La douve du foie a un cycle indirect, dans lequel l’escargot d’eau douce Galba truncatula joue un rôle important en tant qu’hôte intermédiaire. La présence de cet escargot d’eau douce est nécessaire pour compléter le cycle de la douve du foie. Dans le foie, la douve adulte pond des œufs qui sont excrétés avec la bile dans le fumier du bétail. Une douve du foie adulte peut produire jusqu’à 4000 à 7000 œufs par jour. Dans le monde extérieur, les larves ciliées ou les larves de miracidium éclosent des œufs. Ces larves de miracidium ont besoin d’un escargot d’eau douce dans les 24 heures pour survivre. Chez l’escargot, les larves se développent davantage en larves caudales. Ces larves quittent l’escargot et se retrouvent ainsi dans le pré. Après avoir perdu sa queue, la larve s’encapsule dans un kyste infectieux (métacercaire). Les herbivores s’infectent lorsque les kystes sont mangés dans l’herbe. Les douves du foie juvéniles se développent dans l’intestin grêle dans les heures suivant l’admission. Ces douves traversent la paroi intestinale et migrent à travers la cavité abdominale vers le foie et les voies biliaires. La durée de vie d’une douve du foie chez les bovins varie de 6 mois à deux ans.
Fig. le cycle de la douve du foie chez le bovin avec un hôte intermédiaire Galba truncatula
Chez les bovins, une infection est généralement subclinique et donc dormante, avec pour conséquence des répercussions économiques. Chez les moutons, cela peut entraîner une mortalité aiguë, en particulier chez les jeunes animaux.
Le diagnostic de la douve du foie peut être posé de plusieurs manières. Toutes les méthodes ne sont pas pertinentes à tout moment de l’infection.
Le nombre d’oeufs excrétés par les vers adultes peut être démontré par la recherche sur le fumier (flottation par sédimentation). Le fumier (pris par voie rectale) est examiné au microscope pour mettre en évidence la présence de douves du foie. La présence d’oeufs du parasite n’est pas révélatrice et ne peut être effectuée à tout moment. Par exemple, dans la période prépatente, il n’y a pas de sécrétion d’œufs aux stades immatures. De plus, le nombre d’œufs trouvés dans les fèces n’est pas toujours lié au nombre de parasites adultes dans le foie. Après enkystement d’un métacercaire, il faut en moyenne 10 à 12 semaines pour que la douve du foie mûrisse et excrète les œufs. Le meilleur moment pour faire des recherches sur le fumier est 3 mois après la fin de la saison de pâturage. En raison de l’excrétion intermittente, il est bien sûr préférable d’échantillonner plusieurs animaux d’un groupe. La détection de douves du foie dans le fumier fournit des informations sur l’infestation du groupe.
Une infestation de douve du foie donne lieu à la formation d’anticorps dans le sang. Ces anticorps peuvent être détectés dans le sang par un test ELISA quatre semaines après avoir contracté une infection par la douve du foie. Les anticorps sont détectables jusqu’ à 180 jours après une infection. Cela implique qu’une infection acquise à l’automne peut encore fournir un test positif aux anticorps dans le sang l’année suivante. Par conséquent, ce test ne peut pas être utilisé de manière efficace pour démontrer une contamination. En plus de détecter des anticorps, les niveaux d’enzymes hépatiques pour la gamma-glutamyl transférase (GGT) et la glutamate déshydrogénase peuvent également être examinés pour avoir une idée des dommages au foie qui ont eu lieu.
Le ratio de densité optique (ODR) des anticorps dirigés contre Fasciola hepatica est déterminé par la recherche sur le lait en cuve. Cette recherche sur le lait en cuve peut être effectuée toute l’année, mais de préférence avant la fin de la saison de pâturage. Cela donne à l’agriculteur une idée du degré de contamination au niveau de l’exploitation. Un ODR 0,50 indique une contamination grave par la douve du foie avec des conséquences négatives possibles sur la production de lait et la fertilité.
Un test ELISA détectant les antigènes dans le fumier (haute sensibilité) peut être utilisé pour déterminer si un animal est fortement infecté ou non.
Les animaux décédés peuvent également être autopsiés pour connaitre la gravité de l’atteinte du foie.
La réponse immunitaire au contact d’agents pathogènes peut être divisée en une réponse immunitaire non spécifique et une réponse immunitaire acquise. La réponse immunitaire non spécifique, comme le mot l’indique, n’est pas spécifique à un pathogène particulier et ne conduira donc pas à une mémoire immunologique. Dans la réponse immunitaire acquise ou adaptative, les cellules B qui peuvent se différencier en plasmocytes sécrétant des anticorps et les cellules T qui se différencient en cellules T cytotoxiques CD8 +, cellules T auxiliaires CD4 + et cellules T régulatrices sont importantes. On en sait beaucoup sur les cellules T auxiliaires de type 1 (cellule Th1) et de type 2 (cellule Th2). La cellule Th1 produit principalement de l’IFN-γ et est importante pour l’activation des macrophages, pour l’élimination des agents pathogènes intracellulaires et l’immunité cellulaire. La cellule Th2 produit principalement de l’IL-4 et est importante pour l’activation et le recrutement des cellules inflammatoires et pour l’immunité humorale.
Les infections dues à Fasciola hepatica sont associées à la libération de concentrations élevées d’interleukine 4 (IL-4), d’IL-5 et d’IL-13, entraînant finalement une augmentation des taux d’IgE, de l’éosinophilie et d’autres réponses immunitaires associées au sous-type Th2. La différenciation précoce entre la lignée cellulaire Th1 / Th2 des cellules T auxiliaires est facilitée par les cytokines telles que l’IL-4 et l’IFN-γ. La concentration élevée d’IL-4 dans une infection par la douve du foie et, par conséquent, la forte réponse immunitaire Th2 provoquent également une réponse immunitaire Th1 initiale descendante avec moins de production d’IFN-γ et une réactivité lymphocytaire réduite.
Ci-dessous, une représentation schématique de la régulation de la réponse immunitaire induite contre Fasciola hepatica.
Les vers ont développé plusieurs façons d’échapper à la réponse immunitaire de l’hôte. Par conséquent, Maizels et al. les ont appelés “les maîtres de l’immunomodulation”. Ces propriétés immunomodulatrices permettent au ver de persister dans l’hôte et peuvent entraîner des interactions avec les mécanismes inflammatoires et immunitaires impliqués dans d’autres infections, vaccinations, réactions allergiques ou maladies auto-immunes.
Quelques exemples :
La tuberculose bovine (BTB) causée par Mycobacterium bovis est toujours une maladie majeure chez les vaches partout dans le monde. Les programmes d’éradication dans la plupart des pays sont basés sur :
• SICCT (test comparatif intradermique unique de tuberculine cervicale)
• Test sanguin IFN-ϒ (test de deuxième ligne).
Comme indiqué ci-dessus, lors d’une infection par douve du foie, la réponse immunitaire Th1 supprime ainsi l’immunité cellulaire. Cela peut compromettre la sensibilité des deux tests de dépistage utilisés sur le terrain, entraînant des résultats faussement négatifs.
Cette interconnexion possible a été démontrée par Robin J. Flynn à l’Université de Dublin.
Pour enquêter sur d’éventuelles interférences, il a vacciné les animaux infectés ou non par la douve du foie avec le vaccin BCG (souche avirulente utilisée en médecine humaine).
Les tests SCITT et IFN-y effectués sur les différents groupes d’animaux ont donné les résultats suivants:
L’expérience ci-dessus montre que chez les bovins infectés par la douve du foie, il peut y avoir des interférences avec les tests de dépistage existants pour le BTB utilisés sur le terrain.
Une sécrétion excessive d’IL-4 due à la douve du foie est principalement responsable de la suppression de l’immunité cellulaire Th1 qui se développe après la vaccination avec Mycobacterium bovis.
La douve du foie avec ses propriétés immunomodulatrices peut augmenter la sensibilité de l’hôte aux infections par d’autres agents pathogènes. Après tout, l’effet de régulation à la baisse de l’IL-4 sur la réponse immunitaire Th1 (qui est liée à l’immunité cellulaire) peut intensifier certaines infections où cette immunité est importante.
Des études menées à la fin des années 1970 et au début des années 1980 ont révélé que la co-infection des bovins avec Salmonella dublin et Fasciola hepatica entraînait une augmentation de la gravité de la maladie clinique, une évolution plus longue de la maladie et une augmentation des risques que les animaux co-infectés deviennent porteurs de S. dublin. La réponse pro-inflammatoire supprimée par F. hepatica dans l’infection à Salmonella augmente la sensibilité à ce parasite intracellulaire.
Escherichia coli O157 est une bactérie responsable de la diarrhée hémorragique chez l’homme. Les bovins sont des réservoirs de cette E. coli vérocytotoxinogènes et sont donc un danger potentiel de transmission à l’homme. Une étude menée à l’Université de Liverpool a montré que les bovins infectés par Fasciola hepatica présentent un risque accru de sécrétion de E. coli O157. Grâce à un bon contrôle de la distomatose, une éventuelle contamination par E. coli O157 peut être évitée.
Le contrôle de la douve du foie repose sur deux piliers.
Un bon plan de gestion des pâturages et la mise à l’écart des animaux peuvent déjà beaucoup aider à lutter contre la douve du foie. Avec une gestion adaptée des prairies, le contact entre l’hôte final et les stades infectieux de la douve du foie peut être considérablement réduit.
Il existe différents douvicides sur le marché en Belgique. Tous les produits ne sont pas efficaces contre tous les stades de la douve du foie. Le triclabendazole, actif contre tous les stades de la douve du foie, est utilisé depuis des années pour lutter contre les infections. Le problème est que la douve du foie est de plus en plus résistante à ce médicament. De plus, le triclabendazole ne peut pas être utilisé chez les bovins en lactation. Les produits à base d’oxyclozanide peuvent être utilisés chez les bovins laitiers pendant la lactation et pendant toute la période sèche et sont actifs contre les douves du foie adultes. Dopharma a récemment introduit Distocur 34 mg/ml avec l’ingrédient actif oxyclozanide dans la gamme de produits. Ainsi, le traitement d’une douve du foie ou d’une distomatose chez les bovins laitiers est désormais également possible en Belgique sans utiliser la cascade.
Les infections parasitaires chez les ruminants sont considérées comme des problèmes importants et communs en matière de santé animal. Avec des parasites internes, en tant que vétérinaire, nous pensons principalement aux vers gastro-intestinaux, vers pulmonaires et à la grande douve. Nous pensons rarement ou jamais aux paramphistomes. Néanmoins ces vers plats sont diagnostiqués dans le monde entier. Dans le passé, ils provoquaient principalement des maladies dans les régions tropicales et subtropicales. Aujourd’hui il semble que les infections en Europe occidentale se produisent plus souvent que nous ne le pensons. Les opinions sont partagées concernant l’influence de ces parasites sur la santé animale et sur les résultats techniques.
La paramphistomose, une infection causée par un parasite du genre Paramphistomum est connue depuis des années. Alors que la paramphistomose a toujours été décrite comme une maladie qui se produisait principalement dans les régions tropicales, nous constatons que la prévalence a également augmenté en Europe occidentale ces dernières années (Huson et al., 2017). Parmi les diverses espèces de Paramphistomum, Calicophoron daubneyi (anciennement Paramphistomum daubneyi) se trouve le plus souvent en Europe. En France, en Grande-Bretagne, en Irlande, en Belgique, au Portugal et en Espagne, l’occurrence de ce parasite a considérablement augmenté et l’importance des mesures de lutte possibles a été soulignée (Malrait et al., 2015). Aux Pays-Bas également, l’examen de routine de tous les échantillons de fumier reçus par le GD au cours de la période 2009-2014 a fait état d’une incidence de 15,8% chez les bovins et de 8% chez les ovins (H.W.Ploeger, 2017).
La dissémination due à l’achat d’animaux infectés sur les différents continents, des méthodes de diagnostic améliorées telles que la recherche sur le fumier par une technique modifiée de McMaster, les changements climatiques avec une augmentation des précipitations et des températures élevées, le passage à des traitements plus ciblés pour la grande douve (et non efficaces contre la paramphistomose) ont tous été suggérés comme raisons possibles pour la prévalence croissante. Une étude récente basée sur la méthode de séquençage Amplicon menée par l’Université d’Édimbourg a montré l’impact des mouvements intensifs des animaux sur la propagation de l’infection (Sargison et al., 2019). Sur la base de ce résultat, un bon contrôle des parasites est nécessaire, en plus des mesures préventives naturelles telles que le contrôle de l’hôte intermédiaire en abaissant le niveau d’eau.
Le cycle de vie de Calicophoron daubneyi présente de nombreuses similitudes avec celui de la grande douve Fasciola hepatica. En plus du même hôte final, le Paramphistome a également un cycle indirect, l’escargot d’eau douce Galba Truncatula étant l’hôte intermédiaire (Kaufmann et al., 1996).
Mais il existe également des différences évidentes entre les deux trématodes. Après ingestion des métacercaires infectieuses par l’hôte final, les larves exkystées sont libérées dans la caillette puis migrent vers le duodénum. Là, elles s’attachent à la muqueuse où elles se développent davantage pendant 3 à 6 semaines. La présence et la migration dans l’intestin grêle peuvent causer des dommages considérables. Par exemple, les stades immatures peuvent coloniser de grandes étendues de la paroi intestinale, provoquant une nécrose (Hendrix et al., 2006). Après la croissance complète du paramphistome, le parasite retourne dans le rumen et le réticulum où il s’attache aux piliers du rumen. Après quelques semaines dans le rumen et le réticulum, le paramphistome adulte est capable de produire des œufs. Ceux-ci se retrouvent dans le pré avec le fumier. C’est uniquement dans un environnement aqueux et si la température est supérieure à 10 °C que les miracidies éclosent. Dans le monde extérieur, ces miracidies ont une durée de vie maximale de 24 heures. Pendant ce temps, ils recherchent l’hôte intermédiaire Galba Truncatula. Après quelques développements chez l’hôte intermédiaire, les cercaires sont excrétées. Les cercaires libérées s’enkystent rapidement en métacercaires dans un endroit approprié (comme de l’herbe près de l’eau). Dans un climat tempéré, ils peuvent survivre jusqu’à 6 mois. L’hôte final est infecté en mangeant l’herbe sur laquelle se trouvent les métacercaires.
Cycle de vie de la paramphistome, Calicophoron daubneyi (Huson et al., 2017)
Une distinction peut être faite entre les symptômes causés par le stade immature d’une part et les stades adultes de l’hôte final d’autre part.
La paramphistomose peut se manifester chez les bovins de deux manières:
La migration des paramphistomes juvéniles et la migration dans la muqueuse de l’intestin grêle peuvent être responsables de la destruction des glandes digestives. Peu de temps après la contamination par la Paramphistomose, une érosion de l’épithélium intestinal avec lésion hémorragique et œdème muqueux peut être observée. L’entérite hémorragique aiguë qui en résulte peut être accompagnée de diarrhée sévère, de perte d’appétit, de déshydratation, de perte de poids, d’anorexie et même de mort. La réinfection des animaux est souvent associée à des réactions d’hypersensibilité de type 1, qui peuvent augmenter la gravité des symptômes.
Les manifestations relativement légères de vers adultes dans le rumen provoquent rarement des symptômes cliniques.
En revanche, des quantités massives de paramphistomes, de préférence regroupées au niveau des piliers du rumen, peuvent provoquer un météorisme, une atrophie du rumen et une formation d’oedème au niveau des plis de la muqueuse du rumen. Cela peut s’accompagner d’un fumier faible et d’une diminution de l’appétit.
Des recherches histopathologiques sur des vaches infectées ont montré qu’il existe une corrélation entre la quantité de paramphistomes et les dommages au rumen tels que l’hyperkératose et l’infiltration de cellules inflammatoires (Fuertes et al., 2015). Cependant, la question est de savoir si la présence de paramphistomes a un effet significatif sur la santé, la croissance et les performances de l’hôte final. En revanche, une étude au niveau de l’abattoir a démontré une nette association négative entre une infection par la Paramphistomose et le poids de la carcasse de même que la couche graisseuse de l’animal (Bellet et al., 2016).
Les symptômes cliniques ne sont généralement pas très spécifiques et ne peuvent donc pas fournir un diagnostic clair.
Si l’historique des cas se réfère à des animaux provenant de zones de pâturage souvent inondées et souffrant de diarrhée sévère, le diagnostic doit certainement prendre en compte une éventuelle infection à la paramphistomose.
À ce jour, la présence de vers adultes (stade de production d’œufs) ne peut être démontrée que par des tests sur le fumier.
Une distinction peut être faite entre les analyses fécales qualitatives et quantitatives. Les tests qualitatifs sont généralement suffisants pour les examens de routine. Il permet de vérifier si un animal est infecté ou non.
Pour obtenir une bonne image du degré d’infection, il est préférable de faire une détermination quantitative. Entre autres choses, le nombre d’oeufs par gramme de fèces (= EPG) peut être déterminé (Vercruysse, 1992). L’une des méthodes quantitatives utilisées pour déterminer l’EPG de différents types de parasites est la méthode McMaster. Cette méthode utilise pour cela une chambre de comptage. Les œufs des trématodes étant assez lourds, des fluides de flottation d’un poids spécifique supérieur à 1,35 doivent être utilisés.
Rieu et al, 2007 ont étudié le degré de fiabilité de la recherche sur le fumier dans la paramphistomose. Une relation significative entre le nombre d’EPG et la gravité de l’infection a été trouvée. La découverte de plus de 100 œufs par gramme de fumier a indiqué qu’il y avait plus de 100 paramphistomes adultes dans le rumen ou le reticulum.
Dans la thèse de maîtrise de Karen Malrait à l’Université de Gand, une valeur seuil de 200 EPG a été utilisée pour distinguer une infection majeure (avec plus de 201 paramphistomes adultes dans le rumen) des infections plus légères. Cependant, la quantité d’œufs dans les fèces ne dit rien sur la pathogénicité de l’infection, car les symptômes sont principalement causés par les stades immatures.
À des stades immatures, les analyses de fumier peuvent conduire à un résultat faux négatif. Après tout, les stades immatures n’excrètent pas des œufs. Ce qui peut arriver, c’est que des stades immatures peuvent être trouvés dans le fumier d’animaux très infectés.
La nécroscopie sur des animaux morts peut fournir pas mal d’informations.
Dans la forme aiguë de l’infection, l’ouverture de l’intestin révèle la présence de paramphistomes immatures de couleur rouge de un à deux millimètres (selon leur stade de développement), de petites plaies superficielles et d’un œdème de la muqueuse.
Dans la forme chronique, vous voyez les parasites adultes accrochés à la muqueuse lorsque vous ouvrez le rumen.
Il existe de nombreux progrès dans la recherche sur les techniques sérologiques et moléculaires qui pourraient potentiellement conduire à de meilleurs diagnostics à l’avenir.
Tout comme pour une infection par la grande douve, le contrôle repose sur deux principes.
La prévention
Un plan de gestion des pâturages bien pensé qui garantit que les vaches ne peuvent pas rester dans les zones marécageuses est l’une des choses les plus importantes qui puisse être mise en œuvre. De même, le fait de ne pas permettre aux jeunes animaux sensibles de brouter avec des animaux plus âgés ou de ne pas permettre aux jeunes animaux de brouter pendant la période la plus dangereuse de la saison de pâturage peut entraîner une forte baisse de la pression infectieuse. Réduire également considérablement les chances de survie de l’escargot d’eau douce par un bon drainage des prairies avec des niveaux d’eau élevés aide déjà beaucoup à réduire les infections par la paramphisomose.
Avec les informations sur l’influence du mouvement de masse des animaux infectés sur la propagation de Calicophoron au Royaume-Uni et en Irlande (à partir de l’essai mené par l’Université d’Édimbourg), il est évident qu’il est également judicieux de traiter les animaux infectés. La connaissance de l’état d’infection des animaux nouvellement achetés est donc certainement importante.
Mais que faire des animaux infectés?
En Europe, aucun anthelminthique n’est actuellement enregistré pour le traitement des infections par les paramphistomes.
De nombreuses études in vitro et in vivo ont examiné l’efficacité de divers vermifuges contre la paramphistomose. Aucun critère généralement accepté n’a été établi pour évaluer le succès du traitement avec des douvicides dans le traitement des infections à trématodes. Par conséquent, comme dans le traitement des infections à nématodes, la réduction du nombre d’œufs présents dans les fèces est également envisagée.
Dans une étude de 2013, Arias et al. l’oxyclozanide et le closantel, tous deux administrés par voie orale, sont considérés comme efficaces dans cette étude.
Dans la littérature, l’oxyclozanide, homologué pour le traitement de la grande douve, est recommandé comme «la» molécule pour le traitement de la paramphistomose mature. La dose d’oxyclozanide utilisée dans les infections à paramphistome est plus élevée que la dose enregistrée dans les infections de la grande douve. Rolfe et Boray (1987) et Alzieu et al. (1999) ont étudié l’effet de différentes doses d’oxyclozanide sur les paramphistomes.
Oxyclozanide | Dosage (mg/kg) | Nombre d’administration | % Efficacité sur le stade immature | % Efficacité sur le stade adulte | |
10.2 mg/kg avec stop dose | 1 | – | 77.5 % | Alzieu et al (1999) | |
10.2 mg/kg sans stop dose | 1 | – | 94 % | Alzieu et al (1999)Mage et Reynal (1990) | |
18.7 mg/kg | 2x avec un intervalle de 3 jours | – | 99.5 % | Alzieu et al (1999) | |
15 mg/kg | 1 | 85 % | 87,5–100 % | Dorchies (2000) | |
18,7 mg/kg | 1 | 61 – 96,1 % | 56,5–98,1 % | Rolfe et Boray (1987) | |
18,7 mg/kg | 2x avec un intervalle de 3 jours | 99,90 % | 99,9–100 % | Rolfe et Boray (1987) |
La dose élevée de 18,7 mg/ kg deux fois avec un intervalle de trois jours donne une bonne efficacité contre les stades matures et immatures. À des doses aussi élevées, des réactions secondaires telles que la diarrhée et l’apathie sont signalées chez les animaux traités. Ceux-ci disparaissent 24 à 48 heures après le traitement. Craignant les effets secondaires mentionnés ci-dessus, sur le terrain les vétérinaires travaillent avec une dose de 10 mg / kg de poids corporel (sans dose d’arrêt) deux fois avec trois jours d’intervalle et cela avec de bons résultats.
L’infection par des paramphistomes n’étant pas une indication des médicaments vétérinaires contenant de l’oxyclozanide, le traitement de la paramphistomose avec cette substance active ne peut se faire qu’en appliquant la cascade. En cas d’utilisation de doses supérieures à celles indiquées dans la notice, le vétérinaire doit prescrire un délai d’attente suffisamment long pour garantir que les produits issus de l’animal ne contiennent pas de résidus indésirables.
Bien qu’une infection par la paramphistomose soit fréquemment discutée dans la littérature, nous constatons sur le terrain que la présence de la paramphistomose est diagnostiquée, mais qu’une infection avec des symptômes cliniques graves chez les vaches se produit sporadiquement. Une étude récente a montré qu’en plus de l’évolution des conditions météorologiques, le déplacement massif d’animaux positifs est à l’origine de l’augmentation de la prévalence ces dernières années. Le traitement avec un vermifuge n’est recommandé que s’il y a lieu de le faire sur la base du test du fumier. Les traitements inutiles favorisent la résistance. À ce jour, aucun produit n’a encore été enregistré pour le traitement de la paramphistomose. L’oxyclozanide a été décrit dans la littérature comme efficace.
L’autorité Britannique de course de chevaux (BHA) a récemment publié une notification sur l’utilisation des corticostéroïdes intra-articulaire, celle-ci a été également prise en compte par l’Association vétérinaire équine Britannique (BEVA) ; cette notification ne s’applique que partiellement aux chevaux de compétition en Belgique. Néanmoins, cette notification contient des paragraphes qui sont également intéressants pour les propriétaires et vétérinaires belges actifs en sports équestres. Ci-dessous vous pouvez trouver une traduction. La notification initiale est disponible sur le site de BEVA.
Les corticostéroïdes, y compris l’acétonide de triamcinolone, l’acétate de méthylprednisolone, la bétaméthasone et la dexaméthasone, appartiennent aux substances interdites les jours de course. L’utilisation de ces médicaments est autorisée pour un traitement diagnostiqué par un vétérinaire durant un entraînement, par contre l’entraîneur doit s’assurer, que le jour de la course ces substances interdites ne soient pas présente dans l’organisme du cheval.
En janvier 2015 , le BHA a décidé d’implanter une nouveau règle : Après l’administration de corticostéroïdes intra-articulaire, une période de repos obligatoire de 14 jours doit être observée ; selon cette règle un cheval ne peut pas être traiter avec corticostéroïde intra articulaire pendant les 14 jours précédents une course. La période de repos est la période minimale requise et ne peut pas être confondu avec le temps de détection ou de la période d’attente.
Après l’administration de corticostéroïdes à un cheval, en particulier intra-articulaire, le temps d’excrétion peut varier considérablement. Le temps d’excrétion peut être affecté par :
Tous ces facteurs ensemble rendent extrêmement difficile la détermination d’un unique temps de détection que les entraîneurs et les vétérinaires pourrait utilisé . Par conséquent, le BHA n’a publié aucun temps de détection pour l’utilisation des corticostéroïdes intra-articulaire.
Le BHA est au courant des études qui ont été menées sur des chevaux en bonne santé et qui semble indiquer qu’une dose unique de 10 mg de triamcinolone acétonide dans une articulation pendant la période de repos, n’entraînera probablement pas un résultat positif le jour de la course. Ceci ne doit pas aller à l’encontre des autres informations données dans la notification.
En effet, il n’y a pas un temps de détection publié pour l’ utilisation de corticostéroïde par administration intra-articulaire et les 14 jours comme période obligatoire de repos ne doit pas être utilisé comme temps de détection. C’est la stricte responsabilité de l’entraîneur pour s’assurer qu’il n’y a pas de substances interdites les jours de course. Après l’utilisation de corticostéroïdes intra-articulaire, les facteurs mentionnés ci-dessus doivent être pris en compte pour déterminer le temps de la détection.
On se doit d’être conscient qu’il y a une différence entre le temps de détection et le temps d’attente, puisque les deux sont différents. Dans la détermination d’un temps d’attente il faut ajouter une marge de sécurité appropriée au temps de détection. La marge de sécurité doit être déterminée par le vétérinaire traitant en utilisant ses connaissances professionnelles. La variation biologique, pharmaceutique et pharmacologique potentielle doit ainsi être prise en considération. Cela donne matière à discussion entre l’entraîneur et le vétérinaire lorsque l’évaluation doit être faite d’utiliser ou non une substance interdite le jour de la course.
Le jour de la course les entraîneurs peuvent choisir un dépistage volontaire sur la présence de médicaments administrés.