Brachyspira fait l'objet d'une attention croissante, et ce à juste titre, compte tenu des problèmes qu'il pose sur le terrain.

Quelques chiffres ⁽¹⁾ concernant les impacts :

• Mortalité due à l'introduction d'une nouvelle infection (dans un groupe d'enfants de 3 à 12 semaines) :
  • Phase aiguë : 1-4% échec après le sevrage
  • Phase chronique : 1 à 1,5 échec de %
• Effet sur la croissance et la conversion alimentaire (vc) :
  • Phase aiguë : différence de croissance 35-150g, différence de vc 0,1-0,3
  • Phase chronique : différence de croissance de 30 à 35 g, différence de vc de 0,3 (4 à 8 jours supplémentaires nécessaires).

Pour les approches au niveau de l'exploitation, il existe plusieurs options. Il est temps d'examiner de près ces semences et de partager les connaissances.

L'agent

Peu de germes ont changé de nom aussi souvent que le Brachyspira.

En 1921, la dysenterie porcine a été décrite pour la première fois par Whiting, Doyle et Spray, aux États-Unis. Le syndrome a ensuite été rebaptisé Vibrio (Dysenterie Doyle / maladie de Doyle, décrite par le chercheur américain L.P. Doyle en 1944). L'agent responsable a été isolé et identifié par Harris et al. en 1972 et nommé Tréponème. Puis, en 1992, la graine a été rebaptisée par Stanton en tant que Serpulinaet, depuis 1997, sous le nom de Brachyspira (Ochiai et al.) Il s'agit d'une bactérie à Gram négatif, qui se développe en anaérobiose, présente une tolérance limitée à l'oxygène et possède des propriétés hémolytiques. Il s'agit d'un germe en forme de spirale (spirochète) avec deux séries de flagelles. ⁽⁸⁾.

Prévenir

La bactérie traditionnellement connue chez le porc et considérée comme pathogène est la bactérie hautement hémolytique Brachyspira hyodysenteriae.
En outre, les personnes faiblement hémolytiques Brachyspira pilosicoli  La spirochétose intestinale porcine (PIS) ou la spirochétose colique porcine (PCS). Il s'agit d'une affection dont les symptômes sont un peu moins marqués.
Faiblement hémolytique Brachyspira spp trouvés tels que Brachyspira innocens, Brachyspira intermedia et Brachyspira murdochii. Ces espèces sont considérées comme non ou moins pathogènes pour les porcs.

À l'époque, la classification était principalement basée sur les propriétés hémolytiques fortes et faibles. Entre-temps, les techniques analytiques modernes ont fait leur apparition et, par exemple, en 2009, le génome (basé sur le séquençage) du B. hyodysenteriae publié ⁽²⁾. Depuis lors, cette Brachyspira La recherche a pris un essor considérable et provient maintenant de plusieurs pays. Brachyspira spp le génome établi.
En outre, sur la base des lipopolysaccharides de la paroi cellulaire, les isolats peuvent être divisés en au moins 9 sérogroupes, contenant tous différents sérotypes.

Symptômes

Brachyspira hyodysenteriae provoque une inflammation infectieuse du côlon chez les porcs de tous âges et de toutes catégories, des reproducteurs aux porcelets et aux truies. Le principal symptôme clinique est la diarrhée avec des fèces visqueuses, sanglantes et de couleur ciment. En outre, l'apathie, l'affaissement des flancs, l'émaciation et la pâleur des animaux en rechute avec anémie.

Outre l'évolution aiguë, on connaît également une évolution chronique. Dans ce cas, on observe en particulier une mauvaise conversion alimentaire et une croissance réduite.
Si les truies développent des problèmes (chroniques) pendant la lactation, cela peut également entraîner une réduction de la fertilité.

Pathogenèse

Profitant de sa motilité hélicoïdale, le germe pénètre dans les cryptes du côlon et du cæcum et s'y multiplie. Il y a invasion active des cellules de la cupule muqueuse et pénétration des espaces intercellulaires et de la lamina propria. Les bactéries ne pénètrent pas plus profondément que la couche muqueuse intestinale (Salmonelle spp, par exemple, va encore plus loin) et persiste dans la muqueuse du gros intestin.

Cela entraîne une dégénérescence et une inflammation de la muqueuse superficielle, une hypersécrétion de l'épithélium de la muqueuse et des saignements ponctuels multifocaux (dus aux hémolysines/cytotoxines ; tlyA, tlyB, tlyC) sur la surface de la muqueuse. Des lésions diffuses et un œdème sont observés dans le côlon.

 

Localisation préférentielle des germes dans le tractus gastro-intestinal du porc

 

La réduction de la capacité de réabsorption dans le côlon des produits de sécrétion endogènes, qui proviennent toujours de l'épithélium de l'intestin grêle non affecté, entraîne également des diarrhées.

Avec le séquençage du génome, qui existe depuis B. hyodysenteriaeOn a également constaté qu'un plasmide avait un effet sur la colonisation. En l'absence de plasmide, la colonisation serait moindre. ⁽²⁾.
Plusieurs facteurs de virulence potentiels ont été étudiés. B. hyodysenteriae  promouvoir ^(2,3). Il s'agit des hémolysines, des phospholipases, des lipooligosaccharides et des facteurs de virulence liés à la chimiotaxie, à la motilité, aux facteurs d'utilisation de substrats supplémentaires, à la fixation du fer, à la tolérance à l'air et aux lipoprotéines de surface cellulaire.

Diagnostic

Brachyspira Le diagnostic peut être établi par l'examen du fumier. Les écouvillons du rectum ou les échantillons de fèces conviennent tous deux à l'examen. Il est préférable de prélever des échantillons sur des animaux souffrant de diarrhée et n'ayant pas (encore) été traités aux antibiotiques. Les échantillons doivent être examinés à l'état frais, c'est-à-dire réfrigérés et transportés rapidement, et non congelés. Les brachyspires se développant en anaérobiose, les bocaux doivent être fermés hermétiquement et les écouvillons doivent être envoyés avec un milieu anaérobie.
Des tests spécifiques peuvent être effectués en fonction de l'objectif de l'étude. L'IFT ne permet pas de faire la distinction entre un virus pathogène et un virus non pathogène. Brachyspira types.
Pour mettre la main sur le germe et le distinguer, une culture est effectuée au laboratoire, sur un milieu sélectif. En outre, la MALDI-TOF MS et la PCR sont également disponibles pour identifier le germe. La PCR nécessite du matériel sec (c'est-à-dire la présentation d'écouvillons sans milieu).

Depuis le typage du génome, on sait beaucoup de choses sur l'expression des protéines de surface. L'étape suivante consiste à mettre au point un test ELISA pour détecter les populations animales infectées par le virus de la grippe aviaire. B. hyodysenteriae. Ce test pourrait alors être parfaitement utilisé pour le dépistage des populations animales dans le cadre de la surveillance. Aucun test n'est (encore) disponible dans le commerce.
L'examen des gouttes de viande pourrait également être utilisé pour mettre en évidence les anticorps. ⁽⁴⁾.
En outre, il a permis de détecter partiellement le germe (par PCR) dans la salive des porcs ⁽⁵⁾.

Diagnostic différentiel

• Salmonellose
• TGE
• PED
• Trichuris suis
• E. coli

Épidémiologie

Dans les élevages de porcs, les truies sont porteuses. L'excrétion du germe se fait par les fèces.
Les porcelets sont infectés par voie orale. Les problèmes surviennent généralement chez les porcs d'engraissement et les porcelets après le sevrage. En outre, des symptômes peuvent également apparaître chez les animaux en phase d'élevage et chez les truies.

La période d'incubation est de 5 à 7 jours (parfois jusqu'à 3 mois). La maladie se propage lentement dans le troupeau et la morbidité peut atteindre 90%. L'abandon est limité.

L'excrétion par les fèces du porc après la guérison clinique est très longue et peut aller jusqu'à 90 jours. Chez plusieurs autres espèces animales ⁽⁶⁾ le temps d'excrétion est connu : 13 jours pour le chien, 2 jours pour le rat, 8 heures pour le moineau et 4 heures pour la mouche. En revanche, les souris peuvent excréter le germe jusqu'à 180 jours et jouent un rôle important en tant que réservoir pour la propagation.
Dans l'environnement (fumier), les germes peuvent survivre sans problème. ⁽⁶⁾en fonction de la température : dans le fumier 3-7 jours à des températures de 25⁰C, et en dessous de 10⁰C dès 24-38 jours.

La transmission est également possible via l'homme (vêtements, bottes) et les camions. Dans le sol, le germe peut survivre 18 jours à 4⁰C. Dans l'eau contaminée à 5⁰C, le germe peut également survivre 61 jours.
Le stress peut déclencher l'excrétion de germes ⁽⁸⁾. La surpopulation, les fluctuations de température, les déplacements, le mélange d'animaux, les changements d'alimentation et surtout l'introduction de cochettes dans le troupeau de truies sont autant de moments de stress.

Les différences de symptômes entre les exploitations peuvent être en partie liées à la composition du microbiome intestinal normal des porcs de ces exploitations. Et ce microbiome peut à son tour être influencé par la composition de l'alimentation. Par conséquent, un effet indirect sur la colonisation des Brachyspira Elle est décrite ⁽⁷⁾ pour B. hyodysenteriae et B. pilosicoli .

lmmunité ⁽⁸⁾

L'immunité se développe après l'infection. Les animaux qui ont été traités (avec des antibiotiques) ne développent pas de résistance. Par conséquent, ces animaux peuvent être réinfectés ! L'immunité après l'infection peut être spécifique à un sérotype. Après la guérison d'un B. hyodysenteriae l'immunité peut être obtenue pendant 17 semaines. Cependant, certains animaux restent sensibles ; environ 10% ne sont protégés qu'après deux épreuves.
Les niveaux de LgA dans le côlon indiquent un contact récent. Les anticorps sériques sont présents à partir de 10 jours et restent détectables pendant 4 à 5 mois. Les taux sériques de IgG sont en corrélation avec la durée des symptômes cliniques. Aucun des deux n'est fortement corrélé avec la protection.
Chez les porcelets convalescents, l'inhibition de la migration des leucocytes dans le sang périphérique, la réaction d'hypersensibilité retardée et la réponse des lymphocytes T par rapport à l'administration d'un vaccin contre l'hépatite C ont été observées. B. hyodysenteriae. On peut en conclure que l'immunité cellulaire joue également un rôle.
Il n'y a pas de protection croisée entre les sérotypes après une vaccination avec une bactérine (vaccin à base de bactéries tuées). Il existe très probablement une immunité maternelle, que les truies transmettent à leurs porcelets. Les vaccins à base de bactérine confèrent un degré de protection.

Thérapie

Lorsqu'il y a des problèmes cliniques dans une exploitation et qu'un brachyspira En cas d'infection avérée, des antibiotiques sont souvent administrés. La thérapie avec les substances actives suivantes est administrée conformément au formulaire du porc ⁽⁹⁾ conseillé :

• Voie orale : 1er choix : 1 Tiamuline / 1 Tylvalosine / Valnemuline / *Lincomycine / *Tylosine
• Voie orale : 2ème choix : Lincomycine / Spectinomycine
• Parentérale : 1er choix : Tiamulin

* : pas de préférence pour un agent antibactérien particulier, classé par ordre alphabétique.

Le déploiement d'antibiotiques mérite une attention particulière et peut souvent conduire à des résultats décevants. Pour ce faire, il convient d'examiner d'un œil critique les questions suivantes :

• le dosage du médicament ;
• la durée du traitement ;
• possibilité de recontamination par l'environnement ;
• diagnostic correct ;
• introduction par des porcs infectés de manière latente (porteurs) ;
• rongeurs, excréments et autres vecteurs (y compris les mouches) ;
• les infections secondaires.

Résistance ^{(10,11,12,13,14)}

Les informations fournies par le Service de santé animale et l'Université de Gand donnent une idée de la sensibilité des antibiotiques disponibles. En outre, la littérature fournit des informations sur les valeurs de la CMI pour les différents antibiotiques :

• Tiamulin : NL/Belgique : la résistance se manifeste ^(10,11). Pour Brachyspira hyodysenteriae sont dans la littérature ^(12,13,14) MIC₉₀ trouvées à partir de :
  • 2 µg/ml aux États-Unis (2016 ; n=40)
  • 8 µg/ml en Espagne (2011 ; n=87)
  • 4 µg/ml en Belgique (2017 ; n=30)
• Tylvalosine : apparition d'une résistance (depuis 2013, une diminution de la résistance est observée en Belgique contre la Tylvalosine) ^(10,11). Dans la littérature ^(13,14) les éléments suivants peuvent être trouvés pour MIC₉₀ vs. B. hyodysenteriae:
  • 16 µg/ml en Espagne
  • 16 µg/ml en Belgique
• Valnemulin : résistance ^(10,11). La littérature ^(12,13,14) renvoie le MIC suivant₉₀ à mbt. B. hyodysenteriae:
  • 1 µg/ml aux États-Unis
  • 4 µg/ml en Espagne
  • 2 µg/ml en Belgique
• Lincomycine/Tylosine en NL : 2002 : 100% résistants et en 2004 : 70% résistants (n=16) ^(10,11). Dans la littérature ^(12,13,140 en ce qui concerne le MIC₉₀ à trouver :
  • Lincomycine
    • 32 µg/ml aux États-Unis
    • > 64 µg/ml en Espagne
    • 32 µg/ml en Belgique
  • Tylosine
    • > 128 µg/ml aux États-Unis
    • > 128 µg.ml en Espagne
    • > 128 µg/ml en Belgique

Outre le déploiement d'antibiotiques, des mesures d'hygiène telles que le nettoyage, la désinfection et le séchage devraient faire partie de l'approche globale de la lutte contre les maladies infectieuses. brachyspira dans la ferme porcine.

Contrôle : mesures générales

Les avis sont partagés sur l'éradication : est-elle possible et comment doit-elle se faire ?
La méthode la plus invasive est le dépop-repop. Il s'agit de nettoyer complètement l'exploitation, de la débarrasser des résidus de fumier, de l'assécher et d'y installer une nouvelle population. Cela nécessite un investissement considérable et la question qui se pose alors est la suivante : comment rester à l'abri du germe ?
L'autre solution consiste à partir d'une population existante Brachyspira-sans risque. Mais comment procéder ? Aux États-Unis, plusieurs protocoles d'éradication utilisant des antibiotiques ont été décrits. Les procédures effectuées dans ce pays donnent un taux de réussite de 80% ⁽⁸⁾.
Les spécialistes du domaine s'accordent à dire que c'est très difficile. Les méthodes évoluent encore.

Prévention spécifique : vaccination

Il n'y a actuellement aucune activité commerciale Brachyspira-disponible en Europe. Par conséquent, dans le cadre du système en cascade, des vaccins spécifiques à l'entreprise contre la grippe aviaire sont disponibles en Europe. Brachyspira déployée. Des articles scientifiques s'accordent à dire que cela augmente l'excrétion de Brachyspira flache ^(15,16,17).
En outre, on observe souvent une réduction des signes cliniques sur le terrain. Cela va de l'absence d'épidémies aiguës, de la disparition quasi-totale des symptômes, d'une situation relativement satisfaisante, à un déplacement des problèmes vers un âge plus avancé dans la porcherie d'engraissement.
En outre, dans la pratique, le déploiement de vaccins spécifiques à l'exploitation contre les maladies infectieuses et les maladies cardio-vasculaires n'est pas toujours possible. Brachyspira se justifie même dans les exploitations pratiquant l'agriculture biologique. La condition préalable est que les autres facteurs responsables de la diarrhée soient correctement traités avant d'entamer un programme de lutte contre la diarrhée. Brachyspira-vaccination.

Ripac-Labor

Avec vous, Dopharma s'engage pour un secteur des animaux de ferme en bonne santé. Les vaccins spécifiques à l'exploitation peuvent être utilisés dans des cas particuliers, dans des conditions légales clairement définies. L'application d'un vaccin spécifique à l'entreprise peut être une réponse appropriée aux problèmes spécifiques de l'entreprise dans ces cas. L'utilisation des vaccins spécifiques à l'exploitation doit être conforme à la réglementation Cascade. ⁽¹⁸⁾. Cette notion est définie dans le décret sur la médecine vétérinaire.

Dopharma peut vous aider en vous conseillant et en vous assistant : une solide équipe de soutien technique et la longue expérience de Ripac-Labor en matière de diagnostic, d'isolement, de typage et, enfin, de production de vaccins spécifiques à l'entreprise constituent une base solide.

Référence

1. Muirhead et al. Managing Pig Health and the Treatment of Disease (1997).
2. Bellgard et al. (2009) Séquence du génome du spirochète intestinal pathogène Brachyspira hyodysenteriae révèle des adaptations à son mode de vie dans le gros intestin porcin. PLoS One 4(3) : e4641.
3. Black et al. (2015) Analyse de multiples Brachyspira hyodysenteriae confirme que l'espèce est relativement conservée, mais qu'elle présente des variations de souches potentiellement importantes. PLoS One 10(6):e0131050.
4. Song et al. The use of ELISAs for monitoring exposure of pig herds to Brachyspira hyodysenteriae. BMC Vet Res 2012 Jan 17;8:6.
5. Boyer P. et al. Testing oral fluid samples to diagnose swine dysentery in commercial farms. IPVS Mexique. 2014 June 8-11.
6. Manuel vétérinaire Merck (2010), 10e édition.
7. Hampson DJ. Colite brachyspirale : un problème en évolution. IPVS Mexique. 2014 June 8-11.
8. Maladies du porc (2OI2), 10e édition.
9. WVAB Formulary pig (2012).
10. Animal Health Service. Rapport annuel 2011 sur la surveillance de la santé animale.
11. Communication personnelle Université de Gand (2017).
12. Nandita S. et al. Les profils de sensibilité aux antimicrobiens de Brachyspira espèces isolées des troupeaux de porcs aux États-Unis. JCM 2016;54(8):2109-2119.
13. Hidalgo A. et al. Trends towards lower antimicrobial susceptibility and characterisation of acquired resistance among clinical isolates of Brachyspira hyodysenteriae en Espagne. Antimicrob. Agents Chemother. 2011 juillet;55(7):3330-3337.
14. Mahu M. et al. Présence et mécanismes de la résistance acquise aux antimicrobiens en Belgique. Brachyspira hyodysenteriae isolats appartenant à différents complexes clonaux. Vet. Microbiol. 2017;207:125132.
15. Hidalgo A, et al. Contrôle de la dysenterie porcine avec un autovaccin inactivé contre Brachyspira hyodysenteriae dans un troupeau multiplicateur. IPVS Durban. 2008 June 22-26.
16. Rubio P. Expériences espagnoles avec la dysenterie porcine. ESPHM Bruges. 2012 April 25-27.
17. Deza J, et al. Contrôle de la dysenterie porcine avec un autovaccin inactivé contre B. hyodysenteriae dans un élevage de porcs de finition en Espagne. IPVS Mexico. 2014 June 8-11.
18. Décret relatif à la médecine vétérinaire. Chapitre 5. Médicaments vétérinaires. 2018.